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腸易激綜合征(IBS)大鼠模型

Rat Model for Irritable Bowel Syndrome (IBS)

  • 編號DSI533Ra01
  • 物種Rattus norvegicus (Rat,大鼠) 相同的名稱,不同的物種。
  • 原型物種
  • 來源束縛應(yīng)激致腸易激綜合征
  • 模式動物品系SPF級SD大鼠,健康,4~6W,雄性,體重為180g-200g。
  • 實驗分組實驗分六組:正常對照組、模型組、陽性藥組、受試藥組三個劑量組。
  • 實驗周期4-6 weeks
  • 建模方法束縛應(yīng)激法法建立IBS-D模型:大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)一周,實驗前12h禁食。
    大鼠在Day1乙醚吸入麻醉后經(jīng)肛門插入連接注射器的硅膠管(距肛門8cm),結(jié)腸內(nèi)灌入40mg/L的乙酸1mL,然后緩慢拔出硅膠管,用手壓迫肛門并將大鼠尾巴抬高30S,然后用0.01 mol/L PBS 1mL沖洗結(jié)腸。A組大鼠用等體積PBS替代乙酸作相同灌腸處理。然后各組大鼠恢復(fù)6天(至Day6)。
    大鼠于Day7-Day9給予束縛應(yīng)激。實驗前將大鼠置入限制性鼠籠束縛應(yīng)激30 min(將大鼠置于限制起肢體但不影響其呼吸的特制透明圓柱形筒內(nèi))。對照組置于安靜、溫暖(18~20℃)、避強光的環(huán)境中喂養(yǎng),自由飲水、攝食。
  • 應(yīng)用可用于研發(fā)預(yù)防和治療腸易激綜合征的藥物,如益生菌等等。
  • 下載 英文說明書   中文說明書
  • 規(guī)格 每例
  • 價格 ¥ 1320
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  • 腸易激綜合征(IBS)大鼠模型 產(chǎn)品包裝(模擬)
  • 腸易激綜合征(IBS)大鼠模型 產(chǎn)品包裝(模擬)
  • 腸易激綜合征(IBS)大鼠模型 Fig. Modeling:Acetic acid was injected into the colon
  • Certificate 通過ISO 9001、ISO 13485質(zhì)量體系認證

模型評價

1.一般情況觀察:
觀察大鼠皮毛色澤、精神狀態(tài)及活動度。
2.體質(zhì)量增長率計算:
適應(yīng)性飼養(yǎng)結(jié)束后秤取實驗大鼠體質(zhì)量作為初始體質(zhì)量,實驗期間觀測每日體質(zhì)量,求得體質(zhì)量增長率。
體質(zhì)量增長率=(當日體質(zhì)量一初始體質(zhì)量)/初始體質(zhì)量x100%。
3.糞便顆粒數(shù)和4糞便干濕重比
于Day1、Day3、Day5、Day7-9收集每只大鼠的2個小時的糞便(固定時間點9:00~11:00),統(tǒng)計2個小時的排便顆粒數(shù)。于Day1、Day3、Day5、Day7-9取每只大鼠的1~2粒糞便,稱濕重稱質(zhì)量后置于50度恒溫箱烘烤 ,再稱干重。
糞便含水量= (濕重-干重)/濕重x100%。
腹壁撤退反射(AWR評分)
AWR評分于Day9進行。大鼠在實驗前24 h禁食不禁水,輕觸其肛門部使其排盡大便。大鼠輕度麻醉狀態(tài)下從肛門緩慢插入未充氣涂石蠟油后帶球囊的導(dǎo)管,球囊末端距肛門約1 cm,在肛門外1cm處將其固定在大鼠尾根部后。每只大鼠給與球囊擴張3次,容量分別為1.0、1.5、2.0 ml,每次擴張持續(xù)3-5 min,間隔30 s(以防腸道缺血)。每個容量重復(fù)3次,取平均值。
4.AWR評分標準:0分,給予結(jié)直腸擴張刺激時大鼠情緒基本穩(wěn)定;1分,給予刺激時變得不穩(wěn)定,偶爾扭動頭部;2分,腹背部肌肉輕微收縮但腹部未抬離地面;3分,腹背部肌肉較強烈收縮并把腹部抬離地面;4分,腹部肌肉強烈收縮,腹部呈弓形并把腹部、會陰部抬離地面。
AWR評分標準:
0分,給予結(jié)直腸擴張刺激時大鼠情緒基本穩(wěn)定;
1分,給予刺激時變得不穩(wěn)定,偶爾扭動頭部;
2分,腹背部肌肉輕微收縮但腹部未抬離地面;
3分,腹背部肌肉較強烈收縮并把腹部抬離地面;
4分,腹部肌肉強烈收縮,腹部呈弓形并把腹部、會陰部抬離地面。

5.曠場實驗檢測大鼠的自主行為
曠場實驗所用實驗箱為高30~40cm,底邊長為100 cm的曠場,周壁的顏色為黑色,曠場底面被平均分為25個4×4 cm的小方格。正上方架攝像頭,視野覆蓋整個曠場。將大鼠放置在正中央格,同時進行攝像和計時,時間為5 min。通過計算機示蹤分析系統(tǒng)來分析大鼠在一定時間內(nèi)的活動狀態(tài)。實驗室要保持安靜,室溫為20 ℃左右,光線充足。觀察指標:方格間穿行次數(shù)(動物的四肢從一個格進入另一個格為穿行一次)、直立次數(shù)(動物雙前肢同時離地,或者雙前肢放在墻壁上算作直立一次)、中央格停留時間、穿過中央格的次數(shù)。
研究認為,經(jīng)過的格子數(shù)代表動物的興奮性;站立的次數(shù)代表動物對陌生環(huán)境的適應(yīng)能力。

6.胃排空測定
每只大鼠于Day10給予2ml阿拉伯膠+活性炭粉混合糊狀物灌胃,30min后處死并開腹,自門至為腸吻合口取胃,稱胃全重以及胃凈重。
胃排空率(100%):(1-(胃全重-胃凈重)/炭粉混合糊狀物重)x100%。

7.小腸推進比測定
將大鼠取出上端自幽門、下端至回盲部的腸管,鋪直后測量幽門至回盲部全長(小腸總長度)及幽門至炭末前沿的距離(炭末推進長度),計算小腸推進百分率:
小腸推進比(100%)=活性炭推進距離/小腸全長x100%。

組織病理學

取材:
將大鼠處死,取結(jié)腸,在距肝門口2cm出取結(jié)腸組織,分為2份,一份10%中性甲醛溶液固定。另一份放置-80度保存,可進行后續(xù)分子生物學檢測。
處死大鼠,大鼠仰臥固定在手術(shù)臺上,充分暴露腹主動脈,用真空采血管從從腹部主動脈采血,收集血液后,室溫靜2h,然后于4℃3000r離心10分鐘提取血清,放入-80冰箱凍存。

結(jié)腸組織進行石蠟包埋,切片(5um),進行HE染色。

標志因子水平

統(tǒng)計學分析

應(yīng)用SPSS軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料以均數(shù)±標準差(x ±s)表示,采用t檢驗,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05表示有顯

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編號 適用物種:Rattus norvegicus (Rat,大鼠) 應(yīng)用(僅供研究使用,不用于臨床診斷!)
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